在本地或公共测序数据上运行 nf-core 生物信息学流程。
目标用户: 没有专门生物信息学培训的实验室科学家和研究人员,他们需要运行大规模组学分析——差异表达、变异检测或染色质可及性分析。
- [ ] 第 0 步:获取数据(如果来自 GEO/SRA)
- [ ] 第 1 步:环境检查(必须通过)
- [ ] 第 2 步:选择流程(与用户确认)
- [ ] 第 3 步:运行测试配置(必须通过)
- [ ] 第 4 步:创建样本表
- [ ] 第 5 步:配置并运行(与用户确认基因组)
- [ ] 第 6 步:验证输出
如果用户有本地 FASTQ 文件,跳过此步骤。
对于公共数据集,首先从 GEO/SRA 获取。完整工作流参见 references/geo-sra-acquisition.md。
快速开始:
# 1. 获取研究信息
python scripts/sra_geo_fetch.py info GSE110004
# 2. 下载(交互模式)
python scripts/sra_geo_fetch.py download GSE110004 -o ./fastq -i
# 3. 生成样本表
python scripts/sra_geo_fetch.py samplesheet GSE110004 --fastq-dir ./fastq -o samplesheet.csv决策点: 获取研究信息后,与用户确认:
然后继续第 1 步。
首先运行。环境不通过则流程会失败。
python scripts/check_environment.py所有关键检查必须通过。如果任何一项失败,提供修复说明:
| 问题 | 解决方案 |
|---|---|
| 未安装 | 从 https://docs.docker.com/get-docker/ 安装 |
| 权限被拒绝 | sudo usermod -aG docker $USER 然后重新登录 |
| 守护进程未运行 | sudo systemctl start docker |
| 问题 | 解决方案 |
|---|---|
| 未安装 | `curl -s https://get.nextflow.io |
| 版本 < 23.04 | nextflow self-update |
| 问题 | 解决方案 |
|---|---|
| 未安装 / < 11 | sudo apt install openjdk-11-jdk |
在全部检查通过之前不要继续。 对于 HPC/Singularity,参见 references/troubleshooting.md。
决策点:继续之前与用户确认。
| 数据类型 | 流程 | 版本 | 目标 |
|---|---|---|---|
| RNA-seq | rnaseq |
3.22.2 | 基因表达 |
| WGS/WES | sarek |
3.7.1 | 变异检测 |
| ATAC-seq | atacseq |
2.1.2 | 染色质可及性 |
从数据自动检测:
python scripts/detect_data_type.py /path/to/data流程特定详情:
使用小数据验证环境。在真实数据上运行之前必须通过。
nextflow run nf-core/<pipeline> -r <version> -profile test,docker --outdir test_output| 流程 | 命令 |
|---|---|
| rnaseq | nextflow run nf-core/rnaseq -r 3.22.2 -profile test,docker --outdir test_rnaseq |
| sarek | nextflow run nf-core/sarek -r 3.7.1 -profile test,docker --outdir test_sarek |
| atacseq | nextflow run nf-core/atacseq -r 2.1.2 -profile test,docker --outdir test_atacseq |
验证:
ls test_output/multiqc/multiqc_report.html
grep "Pipeline completed successfully" .nextflow.log如果测试失败,参见 references/troubleshooting.md。
python scripts/generate_samplesheet.py /path/to/data <pipeline> -o samplesheet.csv脚本会:
对于 sarek: 如果无法自动检测,脚本会提示输入肿瘤/正常状态。
python scripts/generate_samplesheet.py --validate samplesheet.csv <pipeline>rnaseq:
sample,fastq_1,fastq_2,strandedness
SAMPLE1,/abs/path/R1.fq.gz,/abs/path/R2.fq.gz,auto
sarek:
patient,sample,lane,fastq_1,fastq_2,status
patient1,tumor,L001,/abs/path/tumor_R1.fq.gz,/abs/path/tumor_R2.fq.gz,1
patient1,normal,L001,/abs/path/normal_R1.fq.gz,/abs/path/normal_R2.fq.gz,0
atacseq:
sample,fastq_1,fastq_2,replicate
CONTROL,/abs/path/ctrl_R1.fq.gz,/abs/path/ctrl_R2.fq.gz,1
python scripts/manage_genomes.py check <genome>
# 如果未安装:
python scripts/manage_genomes.py download <genome>常见基因组:GRCh38(人类)、GRCh37(旧版)、GRCm39(小鼠)、R64-1-1(酵母)、BDGP6(果蝇)
决策点:与用户确认:
nextflow run nf-core/<pipeline> \
-r <version> \
-profile docker \
--input samplesheet.csv \
--outdir results \
--genome <genome> \
-resume关键标志:
-r:固定版本-profile docker:使用 Docker(HPC 用
singularity)--genome:iGenomes 键-resume:从检查点继续资源限制(如需要):
--max_cpus 8 --max_memory '32.GB' --max_time '24.h'ls results/multiqc/multiqc_report.html
grep "Pipeline completed successfully" .nextflow.logrnaseq:
results/star_salmon/salmon.merged.gene_counts.tsv -
基因计数results/star_salmon/salmon.merged.gene_tpm.tsv - TPM
值sarek:
results/variant_calling/*/ - VCF 文件results/preprocessing/recalibrated/ - BAM 文件atacseq:
results/macs2/narrowPeak/ - Peak 调用results/bwa/mergedLibrary/bigwig/ - 覆盖度轨迹常见退出代码和修复方案参见 references/troubleshooting.md。
nextflow run nf-core/<pipeline> -resume本技能作为原型示例提供,演示如何将 nf-core 生物信息学流程集成到 Claude Code 中用于自动化分析工作流。当前实现支持三个流程(rnaseq、sarek 和 atacseq),作为社区扩展支持全套 nf-core 流程的基础。
本技能仅供教育和研究用途,在未针对您的特定用例进行适当验证之前,不应视为生产就绪。用户负责确保其计算环境满足流程要求并验证分析结果。
Anthropic 不保证生物信息学输出的准确性,用户应遵循验证计算分析的标准实践。此集成未经 nf-core 社区官方认可或关联。
发表结果时,请引用相应的流程。引用信息可在每个 nf-core 仓库的 CITATIONS.md 文件中找到(例如 https://github.com/nf-core/rnaseq/blob/3.22.2/CITATIONS.md)。